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研究と執筆

Original Articles

[64] A negative-solvatochromic fluorescent probe for visualizing intracellular distributions of fatty acid metabolites

Keiji Kajiwara, Hiroshi Osaki, Steffen Greßies, Keiko Kuwata, Ju Hyun Kim, Tobias Gensch, Yoshikatsu Sato, Frank Glorius, Shigehiro Yamaguchi, Masayasu Taki 

Nature Communications (2022) 13 2533 DOI: https://doi.org/10.1038/s41467-022-30153-6

Press release

[63] Plasma membrane damage limits replicative lifespan in yeast and human fibroblasts

Keiko Kono, Yoshikazu Johmura, Yohsuke Moriyama, Yumiko Masukagami, Koutarou Nishimura, Hunter Barbee, Hiroshi Takase, Shinju Sugiyama, Yoshikatsu Sato, Tetsuya Higashiyama and Makoto Nakanishi

bioRxiv (2021) DOI: https://doi.org/10.1101/2021.03.26.437120

[62] Rapid selective proliferation of mitochondria during zygote maturation in the uniparental inheritance of Physarum polycephalum 

Naoki Urakawa, Kakishi Uno, Yoshikatsu Sato, Tetsuya Higashiyama, Narie Sasaki

Cytologia (2022) in press DOI: 

[61] Optical clearing of plant tissues for fluorescence imaging

Daisuke Kurihara, Yoko Mizuta, Shiori Nagahara, Yoshikatsu Sato, Tetsuya Higashiyama
Journal of Visualized Experiments  (2022) 179 e63428 DOI:https://doi.org/10.3791/63428

[60] Dynamics of mitochondrial distribution during development and asymmetric division of rice zygotes 

Hanifah Aini, Yoshikatsu Sato, Kakishi Uno, Tetsuya Higashiyama, Takashi Okamoto

Plant Reproduction (2022) 35 47-60 DOI:  https://doi.org/10.1007/s00497-021-00430-3

[59] N-Aryl Pyrido Cyanine derivatives: nuclear and organelle DNA markers for two-photon and super-resolution imaging

Kakishi Uno, Nagisa Sugimoto, Yoshikatsu Sato* 

bioRxiv (2020) DOI: https://doi.org/10.1101/2020.05.26.116335

 

N-aryl pyrido cyanine derivatives are nuclear and organelle DNA markers for two-photon and super-resolution imaging

Kakishi Uno, Nagisa Sugimoto, Yoshikatsu Sato*

Nat Commun (2021) 12 2650 DOI: https://doi.org/10.1038/s41467-021-23019-w

Press release】【Eurek Alert

Highlighted in Nat Commun 

Mentions in news and blog ScienMag】【Bioengineer.org】【Phys.org】【AZO Life Science】【Ebiotrade】【Youtube】【Google Podcasts】【Amazon Music】【Spotify】【Apple Podcast

[58] Trade-off between plasticity and velocity in mycelial growth

Sayumi Fukuda, Riho Yamamoto, Naoki Yanagisawa, Naoki Takaya, Yoshikatsu Sato, Meritxell Riquelme, Norio Takeshita

bioRxiv (2020) DOI: https://doi.org/10.1101/2020.10.25.354373

mBio (2021) 12 e03196-20 DOI: https://doi.org/10.1128/mBio.03196-20

Press release

Highlighted in mBio

Highlighted in The Scientist

[57] Two atypical ANGUSTIFOLIA without a plant-specific C-terminus regulate gametophore and sporophyte shapes in the moss Physcomitrella patens

Katsuaki Takechi, Hiroaki Nagase, Tomoyuki Furuya, Koro Hattori, Yoshikatsu Sato, Kensuke Miyajima, Tomofumi Higuchi, Ryuya Matsuda, Susumu Takio, Hirokazu Tsukaya, Hiroyoshi Takano*

Plant J (2021) 105 1390-1399

DOI: https://doi.org/10.1111/tpj.15121

 

[56] A Fused Thiophene-S,S-Dioxide-Based Super-Photostable Fluorescent Marker for Lipid Droplets

Masayasu Taki, Keiji Kajiwara, Eriko Yamaguchi, Yoshikatsu Sato, Shigehiro Yamaguchi

ChemRxiv (2020) DOI:https://chemrxiv.org/articles/preprint/A_Fused_Thiophene-S_S-Dioxide-Based_Super-Photostable_Fluorescent_Marker_for_Lipid_Droplets/12999035/1

ACS Mater Lett (2021) 3 42-49 DOI: https://pubs.acs.org/doi/10.1021/acsmaterialslett.0c00451

 

[55]Ran-GTP is non-essential to activate NuMA for spindle pole focusing, but dynamically polarizes HURP to control mitotic spindle length

Kenta Tsuchiya, Hisato Hayashi, Momoko Nishina, Masako Okumura, Yoshikatsu Sato, Masato Kanemaki, Gohta Goshima, Tomomi Kiyomitsu*

bioRxiv (2020) DOI: 10.1101/473538

Ran-GTP Is Non-essential to Activate NuMA for Mitotic Spindle-Pole Focusing but Dynamically Polarizes HURP Near Chromosomes

Kenta Tsuchiya, Hisato Hayashi, Momoko Nishina, Masako Okumura, Yoshikatsu Sato, Masato Kanemaki, Gohta Goshima, Tomomi Kiyomitsu*

Cur Biol (2021) 31 115-127.e3 DOI: https://doi.org/10.1016/j.cub.2020.09.091

 

[54] Subnuclear gene positioning through lamina association affects copper tolerance

Yuki Sakamoto, Mayuko Sato, Yoshikatsu Sato, Akihito Harada, Takamasa Suzuki, Chieko Goto, Kentaro Tamura, Kiminori Toyooka, Hiroshi Kimura, Yasuyuki Ohkawa, Ikuko Hara-Nishimura, Shingo Takagi, Sachihiro Matsunaga*

Nat Commun (2020) 11 5914 DOI: https://doi.org/10.1038/s41467-020-19621-z

Press release】【科学新聞

[53] Arabidopsis GEX1 Is a Nuclear Membrane Protein of Gametes Required for Nuclear Fusion During Reproduction

Shuh-ichi Nishikawa*, Yuki Yamaguchi, Chiharu Suzuki, Ayaka Yabe, Yuzuru Sato, Daisuke Kurihara, Yoshikatsu Sato, Daichi Susaki, Tetsuya Higashiyama, Daisuke Maruyama

Front Plant Sci (2020) 11 548032 DOI: https://doi.org/10.3389/fpls.2020.548032

Press release】【科学新聞

[52] Post‐Assembly Photomasking of Potassium Acyltrifluoroborates (KATs) for Two‐Photon 3D Patterning of PEG‐Hydrogels

Haewon Song, Dino Wu, Dimitry Mazunin, Sizhou M. Liu, Yoshikatsu Sato, Nicolas Broguiere, Marcy Zenobi‐Wong, Jeffrey W. Bode* 

Helvetia Chimica Acta (2020) 103 e2000172 DOI: https://doi.org/10.1002/hlca.202000172

[51] Cell-cell adhesion in plant grafting is facilitated by β-1, 4-glucanases

Michitaka Notaguchi*, Ken-ichi Kurotani, Yoshikatsu Sato, Ryo Tabata, Yaichi Kawakatsu, Koji Okayasu, Yu Sawai, 

Ryo Okada, Masashi Asahina, Yasunori Ichihashi, Ken Shirasu, Takamasa Suzuki, Masaki Niwa, Tetsuya Higashiyama

bioRxiv (2020) DOI: 10.1101/2020.03.26.010744

Science (2020) 369 698-702 DOI: https://doi.org/10.1126/science.abc3710

​【Press release】【日本経済新聞

[50] Hydrophobicity and CH/π-interaction-driven self-assembly of amphiphilic aromatic hydrocarbons into nanosheets

Tsuyoshi Nishikawa, Hiroki Narita, Soichiro Ogi*, Yoshikatsu Sato, Shigehiro Yamaguchi* 

Chem Commn (2020) 55 14950-14953  DOI:https://doi.org/10.1039/C9CC08070H

[49] ANGUSTIFOLIA genes function in height of gametophore stems and in length of seta and food parts of sporophytes in Physcomitrella patens

Yoshikazu Hashida, Katsuaki Takechi, Tomomi Abiru, Hiroaki Nagase, Koro Hattori, Susumu Takio, Yoshikatsu Sato, Mitsuyasu Hasebe, Hirokazu Tsukaya, Hiroyoshi Takano*

Plant J (2019) 101 1318-1330 DOI: https://doi.org/10.1111/tpj.14592

 

[48] Role of Reelin in cell positioning in the cerebellum and the cerebellum-like structure in zebrafish 

Takayuki Nimura, Tubasa Itoh, Hanako Hagio, Takuto Hayashi, Vincenzo Di Donato, Miki Takeuchi, Takeaki Itoh, Fuduki Inoguchi, Yoshikatsu Sato, Naoyuki Yamamoto, Yu Katsuyama, Filippo Del Bene, Takashi Shimizu, Masahiko Hibi*

Dev Biol (2019) 455 393-408 DOI:https://doi.org/10.1016/j.ydbio.2019.07.010

 

[47] The Effect of Branching on the One‐ and Two‐Photon Absorption, Cell Viability, and Localization of Cationic Triarylborane Chromophores with Dipolar versus Octupolar Charge Distributions for Cellular Imaging

Stefanie Griesbeck, Michail Evripidis, Florian Rauch, Hiroaki Ogasawara, Chenguang Wang, Yoshikatsu Sato, Robert M. Edkins, Zuolun Zhang, Masayasu Taki, Christoph Lambert*, Shigehiro Yamaguchi*, Todd B. Marder*

Chem Eur J (2019) 10 5405-22 DOI: https://doi.org/10.1002/chem.201902461

 

[46] Physcomitrella STEMIN transcription factor induces stem cell formation with epigenetic reprogramming

Masaki Ishikawa*, Mio Morishita, Yohei Higuchi, Shunsuke Ichikawa, Takaaki Ishikawa, Tomoaki Nishiyama, Yukiko Kabeya, Yuji Hiwatashi, Tetsuya Kurata, Minoru Kubo, Shuji Shigenobu, Yosuke Tamada, Yoshikatsu Sato, Mitsuyasu Hasebe*

Nat Plants (2019) 5 681-90 DOI: https://doi.org/10.1038/s41477-019-0464-2

​【Press release】【科学新聞

[45] A photostable fluorescent marker for the super-resolution live imaging of the dynamic structure of the mitochondrial cristae

Chenguang Wang, Masayasu Taki*, Yoshikatsu Sato, Yasushi Tamura, Hideyuki Yaginuma, Yasushi Okada*, Shigehiro Yamaguchi*

Proc Natl Acad Sci USA (2019116 15817-22 DOI: https://doi.org/10.1073/pnas.1905924116

​【Press release】【日本経済新聞

[44] Tuning the π-Bridge of Quadrupolar Triarylborane Chromophores for One- and Two-Photon Excited Fluorescence Imaging of Lysosomes in Live Cells

Stefanie Griesbeck, Michail Evripidis, Chenguang Wang, Hiroaki Ogasawara, Sabine Lorenzen, Lukas Gerstner, Theresa Zang, Jörn Nitsch, Yoshikatsu Sato, Rüdiger Bertermann, Masayasu Taki, Christoph Lambert*, Shigehiro Yamaguchi*, Todd B. Marder*

Chem Sci (2019) 10 5405-22 DOI: https://doi.org/10.1039/C9SC00793H

 

[43] MICROTUBULE DEPLETION DOMAIN 1 localizes at the boundary between female gametes in Arabidopsis thaliana

Hiroki Tsusui*, Yoshikatsu Sato, Daichi Susaki, Tetsuya Higashiyama

Mol Reprod Dev (2019) DOI: https://doi.org/10.1002/mrd.23175

 

[42] Characterization of the Nicotianamine Exporter ENA1 in Rice

Tomoko Nozoye*, Nicolaus von Wirén, Yoshikatsu Sato, Tetsuya Higashiyama, Hiromi Nakanishi and Naoko K. Nishizawa

Front Plant Sci (2019) 10 502 DOI: https://doi.org/10.3389/fpls.2019.00502

 

[41] A highly photostable near-infrared labeling agent based on a phospha-rhodamine for long-term and deep imaging

Marek Grzybowski, Masayasu Taki*, Kieko Senda, Yoshikatsu Sato, Tetsuro Ariyoshi, Yasushi Okada, Ryosuke Kawakami, Takeshi Imamura, Shigehiro Yamaguchi*

Angew Chem Int Ed (2018) 57 10137-10141 DOI: https://doi.org/10.1002/anie.201804731

​【Press release 

[40] Development of microfluidic devices to study the elongation capability of tip-growing plant cells in extremely small spaces

Naoki Yanagisawa*, Nagisa Sugimoto, Hideyuki Arata, Tetsuya Higashiyama, Yoshikatsu Sato*

J Vis Exp (2018) 135 e57262 DOI: https://doi.org/10.3791/57262

 

[39] A Water-soluble Warped Nanographene: Synthesis and Applications for Photo-induced Cell Death

Hsing-An Lin, Yoshikatsu Sato*, Yasutomo Segawa*, Taishi Nishihara, Nagisa Sugimoto, Lawrence T. Scott, Tetsuya Higashiyama, Kenichiro Itami*

Angew Chem Int Ed (2018) 57 2874-8 DOI: https://doi.org/10.1002/anie.201713387

​【Press release

 

[38] A far-red fluorescent probe based on a phospha-fluorescein scaffold for cytosolic calcium imaging
Hiroaki Ogasawara, Marek Grzybowski, Riho Hosokawa, Yoshikatsu Sato, Masayasu Taki*, Shigehiro Yamaguchi*

Chem Commun (2018) 54 299-302 DOI: https://doi.org/10.1039/C7CC07344E

[37] Live imaging reveals the dynamics and regulation of mitochondrial nucleoids during the cell cycle in Fucci2-HeLa cells

Taeko Sasaki, Yoshikatsu Sato, Tetsuya Higashiyama, Narie Sasaki*

Sci Rep (2017) 7 11257 DOI: https://doi.org/10.1038/s41598-017-10843-8

​【Press release】【中日新聞】【日刊工業新聞

[36] A super-photostable phosphole-based dye for multiple-acquisition STED Imaging

 Chenguang Wang, Masayasu Taki*, Yoshikatsu Sato*, Aiko Fukazawa*, Tetsuya Higashiyama, Shigehiro Yamaguchi*

J Am Chem Soc (2017) 139 10374-81 DOI: https://doi.org/10.1021/jacs.7b04418

​【Press release

[35] Capability of tip-growing plant cells to penetrate into extremely narrow gaps

Naoki Yanagisawa*, Nagisa Sugimoto, Hideyuki Arata, Tetsuya Higashiyama, Yoshikatsu Sato*

Sci Rep (2017) 7 1403 DOI: https://doi.org/10.1038/s41598-017-01610-w

​【Press release

[34] Cells reprogramming to stem cells inhibit the reprogramming of adjacent cells in the moss Physcomitrella patens
Yoshikatsu Sato*, Nagisa Sugimoto, Tadayoshi Hirai, Akihiro Imai, Minoru Kubo, Yuji Hiwatashi, Tomoaki Nishiyama, Mitsuyasu Hasebe*

Sci Rep 7 1909 (2017) DOI: 10.1038/s41598-017-01786-1

​【Press release

  • 日本の研究.com「幹細胞化する細胞がとなりの細胞の幹細胞化を抑制することをコケ植物で発見」(2017.05.16)

  • 日経産業新聞「隣の細胞の再生抑制 名大など コケ植物で発見」(2017.05.19 8ページ)

  • 北國新聞「コケ使った実験で幹細胞解明に弾み 金大など研究グループ」(2017.05.16)

  • 日刊工業新聞「隣り合う細胞 幹細胞化抑制 名大が発見」(2017.05.29)

  • 科学新聞「幹細胞化する細胞 隣接細胞の幹細胞化抑制 名大がコケ植物で解明」(2017.06.02 1面)

[33] Spatiotemporal deep-imaging of syncytium induced by the soybean cyst nematode Heterodera glycines

Mina Ohtsu*, Yoshikatsu Sato, Daisuke Kurihara, Takuya Suzaki, Masayoshi Kawaguchie, Daisuke Maruyama, Tetsuya Higashiyama

Protoplasma (2017) 254 2107-15 DOI:10.1007/s00709-017-1105-0

[32] Fluorescent labeling of the cyst nematode for deep tissue live imaging using two-photon microscopy

Mina Ohtsu*, Daisuke Kurihara, Yoshikatsu Sato, Takuya Suzaki, Masayoshi Kawaguchi, Daisuke Maruyama, Tetsuya Higashiyama

Cytologia (2017) 82 251-9 DOI: https://doi.org/10.1508/cytologia.82.251

 

[31] A Lin28 homolog reprograms differentiated cells to stem cells in the moss

Chen Li, Yusuke Sako, Akihiro Imai, Tomoaki Nishiyama, Kari Thompson, Minoru Kubo, Yuji Hiwatashi, Yukiko Kabeya, Dale Karlson, Shu-Hsing Wu, Masaki Ishikawa, Takashi Murata, Philip Benfey, Yoshikatsu Sato, Yosuke Tamada*, Mitsuyasu Hasebe*

Nat Commun (2017) 8 14242 DOI: https://doi.org/10.1038/ncomms14242

​【Press release

[30] Key Structural Elements of Unsymmetrical Cyanine Dyes for Highly Sensitive Fluorescence Turn-on DNA Probe

Kakishi Uno, Taeko Sasaki, Nagisa Sugimoto, Hideto Ito, Taishi Nishihara, Shinya Hagihara, Tetsuya Higashiyama, Narie Sasaki, Yoshikatsu Sato, Kenichiro Itami*

Chem Asian J (2017) 12 233-8 DOI: https://doi.org/10.1002/asia.201601430

Highlighted in chemistry views
Most accessed article in January 2017 (First Place)
Most accessed article in February 2017 (Third Place)
Most accessed article between March 2016 to February 2017 (22nd Place)
Most accessed article between May 2016 to April 2017 (11th place)

 

[29] Cytoskeleton dynamics control the first asymmetric cell division in Arabidopsis zygote

Yusuke Kimata, Takumi Higaki, Tomokazu Kawashima, Daisuke Kurihara, Yoshikatsu Sato, Tomomi Yamada, Seiichiro Hasezawa, Frederic Berger, Tetsuya Higashiyama, Minako Ueda*

Proc Natl Acad Sci USA (2016) 113 14157-62 DOI: https://doi.org/10.1073/pnas.1613979113

Selected as a Cover

[28] A macrocyclic fluorophore dimer with flexible linkers: Bright excimer emission with long fluorescence lifetime

Hiroshi Osaki, Chih-Ming Chou, Masayasu Taki*, Kai Welke, Daisuke Yokogawa, Stephan Irle*, Yoshikatsu Sato, Tetsuya Higashiyama, Shohei Saito, Aiko Fukazawa, Shigehiro Yamaguchi*

Angew Chem Int Ed (2016) 55 7131-5 DOI: https://doi.org/10.1002/anie.201602239

Selected as a Hot Paper

 

[27] The AMOR arabinogalactan sugar chain induces pollen-tube competency to respond to ovular guidance


Akane G. Mizukami, Rie Inatsugi, Jiao Jiao, Toshihisa Kotake, Keiko Kuwata, Kento Ootani, Satohiro Okuda, Subramanian Sankaranarayanan, Yoshikatsu Sato, Daisuke Maruyama, Hiroaki Iwai, Estelle Garénaux, Chihiro Sato, Ken Kitajima, Yoichi Tsumuraya, Hitoshi Mori, Junichiro Yamaguchi, Kenichiro Itami, Narie Sasaki, Tetsuya Higashiyama*

Curr Biol (2016) 26 1091-7 DOI: http://dx.doi.org/10.1016/j.cub.2016.02.040

​【Press release】

[26] Phospha-fluorescein: A red-emissive gluorescein analogue with high photobleaching resistance

Aiko Fukazawa*, Shinji Suda, Masayasu Taki*, Eriko Yamaguchi, Marek Grzybowski, Yoshikatsu Sato, Tetsuya Higashiyama, Shigehiro Yamaguchi*

Chem Commun (2016)  7 1120-3 DOI: https://doi.org/10.1039/C5CC09345G 

Highlighted as a cover

[25] A Phosphole Oxide Based Fluorescent Dye with Exceptional Resistance to Photobleaching: A Practical Tool for Continuous Imaging in STED Microscopy

Chenguang Wang, Aiko Fukazawa*, Masayasu Taki*, Eriko Yamaguchi, Yoshikatsu Sato, Tetsuya Higashiyama* Shigehiro Yamaguchi*

Angew Chem Int Ed (2015) 54 15213-7 DOI: https://doi.org/10.1002/anie.201507939

 

[24] Lactic acid is a sperm motility inactivation factor in the sperm storage tubules

Mei Matsuzaki, Shusei Mizushima, Gen Hiyama, Noritaka Hirohash, Kogiku Shiba, Kazuo Inaba, Tomohiro Suzuki, Hideo Dohra, Toshiyuki Ohnishi, Yoshikatsu Sato, Tetsuya Kohsaka, Yoshinobu Ichikawa, Tomohiro Sasanami* 

Sci Rep (2015) 5 17643 DOI: https://doi.org/10.1038/srep17643

 

[23] ClearSee: a rapid optical clearing reagent for whole-plant fluorescence imaging

Daisuke Kurihara*, Yoko Mizuta, Yoshikatsu Sato, Tetsuya Higashiyama

Development (2015) 142 4168-79 DOI: https://doi.org/10.1242/dev.127613

Highlighted as a cover

 

[22] Quantification of pollen tube attraction in response to guidance by female gametophyte tissue using artificial microscale pathway

Yoshikatsu Sato*, Nagisa Sugimoto, Tetsuya Higashiyama, Hideyuki Arata

J Biosci Bioeng (2015) 120 697-700 DOI: https://doi.org/10.1016/j.jbiosc.2015.03.021

 

[21] Type IV collagen controls the axogenesis of cerebellar granule cells by regulating basement membrane integrity in zebrafish

Miki Takeuchi, Shingo Yamaguchi, Shigenobu Yonemura, Kisa Kakiguchi, Yoshikatsu Sato, Tetsuya Higashiyama, Takashi Shimizu, Masahiko Hibi* 

PLOS Genet (2015) 11 E1005587 DOI: https://doi.org/10.1371/journal.pgen.1005587

[20] Probing strigolactone receptors in with fluorescence

Yuichiro Tsuchiya†*, Masahiko Yoshimura†, Yoshikatsu Sato, Keiko Kuwata, Shigeo Toh, Duncan Holbrook-Smith, Hua Zhang, Peter McCourt, Kenichiro Itami, Toshinori Kinoshita, Shinya Hagihara* (†These authors contributed equally to this work.)

Science (2015) 349 864-8 DOI: 10.1126/science.aab3831 

​【Press release】

Highlighted in Science

Highlighted in Nat Chem Biol

[19] A red-emitting ratiometric fluorescent probe based on a benzophosphole P-oxide scaffold for the detection of intracellular sodium ion

Masayasu Taki*, Hiroaki Ogasawara, Hiroshi Osaki, Aiko Fukazawa, Yoshikatsu Sato, Kimi Ogasawara, Tetsuya Higashiyama, Shigehiro Yamaguchi* 

Chem Commun (2015) 51 11880-3 DOI: https://doi.org/10.1039/C5CC03547C

 

[18] Environment-sensitive fluorescent probe: A benzophosphole oxide with an electron-donating substituent

Eriko Yamaguchi, Chenguang Wang, Aiko Fukazawa*, Masayasu Taki, Yoshikatsu Sato, Taeko Sasaki, Minako Ueda, Narie Sasaki, Tetsuya Higashiyama*, Shigehiro Yamaguchi*

Angew Chem Int Ed (2015) 54 4539-43 DOI: https://doi.org/10.1002/anie.201500229

Highlighted as a Cover

 

[17] Kinesins have a dual function in organizing microtubules during both tip growth and cytokinesis in Physcomitrella patens

Yuji Hiwatashi*, Yoshikatsu Sato, John H. Doonan

Plant Cell (2014) 26 1256-66 DOI: https://doi.org/10.1105/tpc.113.121723

 

[16] WOX13-like genes are required for reprogramming of leaf and protoplast cells into stem cells in the moss Physcomitrella patens

Keiko Sakakibara, Pascal Reisewitz, Tsuyoshi Aoyama, Thomas Friedrich, Sayuri Ando, Yoshikatsu Sato, Yosuke Tamada, Tomoaki Nishiyama, Yuji Hiwatashi, Tetsuya Kurata, Masaki Ishikawa, Hironori Deguchi, Stefan A. Rensing, Wolfgang Werr, Takashi Murata, Mitsuyasu Hasebe*, Thomas Laux*

Development (2014141 1660-70 DOI: https://doi.org/10.1242/dev.097444

 

[15] System for Stable β-Estradiol-Inducible Gene Expression in the Moss Physcomitrella patens

Minoru Kubo*, Akihiro Imai, Tomoaki Nishiyama, Masaki Ishikawa, Yoshikatsu Sato, Tetsuya Kurata, Yuji Hiwatashi, Ralf Reski, Mitsuyasu Hasebe*

PLoS One (2013) 8 e77356 DOI: https://doi.org/10.1371/journal.pone.0077356

 

[14] Septins promote dendrite and axon development by negatively regulating microtubule stability via HDAC6-mediated deacetylation

Natsumi Ageta-Ishihara, Takaki Miyata, Chika Ohshima, Masahiko Watanabe, Yoshikatsu Sato, Yuki Hamamura, Tetsuya Higashiyama, Ralph Mazitschek, Haruhiko Bito, Makoto Kinoshita*

Nat Commun (2013) 4 2532 DOI: https://doi.org/10.1038/ncomms3532

 

[13] The KAC family of kinesin-like proteins is essential for the association of chloroplasts with the plasma membrane in land plants

Noriyuki Suetsugu†, Yoshikatsu Sato†, Hidenori Tsuboi†, Masahiro Kasahara, Takato Imaizumi, Takatoshi Kagawa, Yuji Hiwatashi, Mitsuyasu Hasebe, Masamitsu Wada* (†These authors contributed equally to this work.)

Plant Cell Physiol (2012) 53 1854-65 DOI: 10.1093/pcp/pcs133

Highlighted as a Cover

 

[12] Physcomitrella cyclin dependent kinase A links cell cycle reactivation to other cellular changes during reprogramming of leaf cells

Masaki Ishikawa, Takashi Murata, Yoshikatsu Sato, Tomoaki Nishiyama, Yuji Hiwatashi, Akihiro Imai, Mina Kimura, Nagisa Sugimoto, Asaka Akita, Yasuko Oguri, William E. Friedman, Mitsuyasu Hasebe*, Minoru Kubo

Plant Cell (2011) 23 2924-38 DOI: 10.1105/tpc.111.088005

 

[11] The Selaginella genome identifies genetic changes associated with the evolution of vascular plants

Jo Ann Banks*, Tomoaki Nishiyama, Mitsuyasu Hasebe, John L Bowman, Michael Gribskov, Claude dePamphilis, Victor A Albert, Naoki Aono, Tsuyoshi Aoyama, Barbara A Ambrose, Neil W Ashton, Michael J Axtell, Elizabeth Barker, Michael S Barker, Jeffrey L Bennetzen, Nicholas D Bonawitz, Clint Chapple, Chaoyang Cheng, Luiz Gustavo Guedes Correa, Michael Dacre, Jeremy DeBarry, Ingo Dreyer, Marek Elias, Eric M Engstrom, Mark Estelle, Liang Feng, Cédric Finet, Sandra K Floyd, Wolf B Frommer, Tomomichi Fujita, Lydia Gramzow, Michael Gutensohn, Jesper Harholt, Mitsuru Hattori, Alexander Heyl, Tadayoshi Hirai, Yuji Hiwatashi, Masaki Ishikawa, Mineko Iwata, Kenneth G Karol, Barbara Koehler, Uener Kolukisaoglu, Minoru Kubo, Tetsuya Kurata, Sylvie Lalonde, Kejie Li, Ying Li, Amy Litt, Eric Lyons, Gerard Manning, Takeshi Maruyama, Todd P Michael, Koji Mikami, Saori Miyazaki, Shin-ichi Morinaga, Takashi Murata, Bernd Mueller-Roeber, David R Nelson, Mari Obara, Yasuko Oguri, Richard G Olmstead, Naoko Onodera, Bent Larsen Petersen, Birgit Pils, Michael Prigge, Stefan A Rensing, Diego Mauricio Riaño-Pachón, Alison W Roberts, Yoshikatsu Sato, Henrik Vibe Scheller, Burkhard Schulz, Christian Schulz, Eugene V Shakirov, Nakako Shibagaki, Naoki Shinohara, Dorothy E Shippen, Iben Sørensen, Ryo Sotooka, Nagisa Sugimoto, Mamoru Sugita, Naomi Sumikawa, Milos Tanurdzic, Günter Theissen, Peter Ulvskov, Sachiko Wakazuki, Jing-Ke Weng, William W G T Willats, Daniel Wipf, Paul G Wolf, Lixing Yang, Andreas D Zimmer, Qihui Zhu, Therese Mitros, Uffe Hellsten, Dominique Loqué, Robert Otillar, Asaf Salamov, Jeremy Schmutz, Harris Shapiro, Erika Lindquist, Susan Lucas, Daniel Rokhsar, Igor V Grigoriev

Science (2011) 332 960-3 DOI: 10.1126/science.1203810

​【Press release】

[10] Chloroplast actin filaments organize meshwork on the photorelocated chloroplasts in the moss Physcomitrella patens

Hiroko Yamashita, Yoshikatsu Sato, Takeshi Kanegae, Takatoshi Kagawa, Masamitsu Wada, Akeo Kadota*

Planta (2011) 233 357-68 DOI: 10.1007/s00425-010-1299-2

 

[9] Microtubules regulate dynamic organization of vacuoles in Physcomitrella patens 

Yoshihisa Oda, Aiko Hirata, Toshio Sano, Tomomichi Fujita, Yuji Hiwatashi, Yoshikatasu Sato, Akeo Kadota, Mitsuyasu Hasebe, Seiichiro Hasezawa*

Plant Cell Physiol (2009) 50 855-68 DOI: 10.1093/pcp/pcp031

 

[8] Kinesins are indispensable for interdigitation of phragmoplast microtubules in the moss Physcomitrella patens

Yuji Hiwatashi, Mari Obara, Yoshikatsu Sato, Tomomichi Fujita, Takashi Murata, Mitsuyasu Hasebe*

Plant Cell (2008) 20 3094-106 DOI: 10.1105/tpc.108.061705

 

[7] Phototropins mediate blue and red light-induced chloroplast movements in Physcomitrella patens

Masahiro Kasahara, Takatoshi Kagawa, Yoshikatsu Sato, Tomohiro Kiyosue, Masamitsu Wada*

Plant Physiol (2004) 135 1388-97 DOI: 10.1104/pp.104.042705

[6] Red light-induced responses in ferns mediated by an unconventional photoreceptor

Hiroko Kawai, Takeshi Kanegae, Steen Christensen, Tomohiro Kiyosue, Yoshikatsu Sato, Takato Imaizumi, Akeo Kadota, Masamitsu Wada*

Nature (2003) 421 287-90 DOI: 10.1038/nature01310

[5] Accumulation response of chloroplasts induced by mechanical stimulation in bryophyte cells

Yoshikatsu Sato, Masamitsu Wada and Akeo Kadota* 

Planta (2003) 216 772-7 DOI: 10.1007/s00425-002-0927-x

 

[4] External Ca2+ is essential for chloroplast movement induced by mechanical stimulation but not by light stimulation

Yoshikatsu Sato, Masamitsu Wada and Akeo Kadota*

Plant Physiol (2001) 127, 497-504 DOI: 10.1104/pp.127.2.497

 

[3] Choice of tracks, microtubules and/or actin filaments, for chloroplast photo-movement is differentially controlled by phytochrome and a blue light receptor

Yoshikatsu Sato, Masamitsu Wada and Akeo Kadota*

J Cell Sci (2001) 114 269-79 

Highlighted as a in this issue

 

[2] Intracellular chloroplast photorelocation in the moss is mediated by phytochrome as well as by a blue-light receptor
Akeo Kadota*, Yoshikatsu Sato, Masamitsu Wada

Planta (2000) 210 932-7 DOI: 10.1007/s004250050700

 

[1] Mechanically induced avoidance response of chloroplasts in fern protonemal cells 

Yoshikatsu Sato, Akeo Kadota*, Masamitsu Wada

Plant Physiol (1999)121 37-44 DOI: http://dx.doi.org/10.1104/pp.121.1.37

 

Reviews

  1. 佐藤良勝 [Development of an infra-red observation microscope equipped with a microbeam irradiation unit] in Japanese (植物の赤外線観察とマイクロビーム照射装置の作製) DIYで顕微鏡を拡張しよう! 実験医学 (2019) 37 3113-6  (ISBN: 9784758125253)

  2. 多喜正泰,佐藤良勝 [Chemistry, latest agricultural biofluorescence molecules group developed by a biological fusion study] in Japanese (化学・生物学の融合研究により開発された最新のアグリバイオ蛍光分子群)  アグリバイオ (20193 8-12 (ISBN: 01327-02)

  3. 大塚沙穂子,佐藤良勝,日渡祐二  [Cytoskeletal regulation of the plant tip growth explored by the live-imaging technique] in Japanese (ライブイメージングで探る細胞骨格を介した植物先端成長制御) アグリバイオ (2019) 3 81-5 (ISBN: 01327-02)

  4. 佐藤良勝,東山哲也,柳澤直樹 [Mechano-properties of tip-growing plant cells analyzed by microfluidic devices ] in Japanese (植物先端成長細胞の機械的性質をマイクロデバイスで理解する) 生物物理 (2018) 58 258-60 DOI: 10.2142/biophys.58.258

  5. 佐藤良勝 植物の蛍光イメージング 生細胞多様性解明に資する光技術ー見て,動かす 公益財団法人金原一郎医学医療振興財団 生体の科学 (2017) 68 (5) 420-1 (ASIN: B0766C8HNP)

  6. 吉村柾彦,土屋雄一朗,佐藤良勝伊丹健一郎木下俊則 萩原伸也 [Strigolactone receptors in Striga hermonthica] in Japanese(寄生植物ストライガのストリゴラクトン受容体タンパク質)Plant Morphol (2017) 29 33-7 DOI: 10.5685/plmorphol.29.33

  7. 佐藤良勝,Chenguang Wang,深澤愛子,多喜正泰,東山哲也,山口茂弘 [A super photostable fluorescent dye that survives in repeated STED laser irradiation] in Japanese (超耐光性蛍光色素が拓く蛍光バイオイメージング)Plant Morphol (2016) 28 9-13 DOI: 10.5685/plmorphol.28.9

  8. 佐藤良勝  光とコケ・シダ植物の生活史/Effects of light on the life cycle of pteridophytes and bryophytes 光と生命の事典 (2016) 日本光生物学協会 光と生命の事典編集委員会編集 100-101 (ISBN: 978-4-254-17161-7) 朝倉書店

  9. 佐藤良勝,門田明雄 [Fluorescent time-lapse imaging system equipped with a microbeam irradiator revealed a unique actin-based mechanism for chloroplast movement] in Japanese (微光束照射装置付き蛍光イメージングシステムにより観えた葉緑体アクチン繊維の動態)Plant Morphol (2012) 24 19-22 DOI: 10.5685/plmorphol.24.19

  10. 佐藤良勝,杉本渚 [Multi-position long time imaging in plant cells] in Japanese (植物細胞における長時間多検体タイムラプス観察)顕微鏡 (200843 76-8 DOI: 10.11410/kenbikyo.43.1_76

  11. 長谷部光泰、藤田知道、倉田哲也、佐藤良勝、久保稔、村田隆、青山剛士、三上浩司、石川雅樹、日渡祐二、青野直樹、篠原直貴、西山智明、棚橋貴子 発生遺伝子の進化 植物の進化(監修:清水健太郎,長谷部光泰) (2007163-73 (ISBN_10: 4-87962-353-9) 学研メディカル秀潤社

  12. Yoshikatsu Sato, Akeo Kadota Chloroplasts movements in response to environmental signals. The Structure and Function of Plastids (eds. Wise RR and Hoober K) (2006) 527-537 DOI: 10.1007/978-1-4020-4061-0 (ISBN: 978-1-4020-4060-3) Part of the Advances in Photosynthesis and Respiration book series Springer

  13. 佐藤良勝 アクチン繊維 (新版)植物の細胞を観る実験プロトコール 顕微鏡観察の基本から最新バイオイメージング技術まで (監修:福田裕穂,西村幹夫,中野明彦) (2006) 202-205 (ISBN_10: 4-87962-299-0) 学研メディカル秀潤社

  14. Masamitsu Wada, Takatoshi Kagawa and Yoshikatsu Sato Chloroplast movement Annu Rev Plant Biol 54, 455-468 (2003) DOI: 10.1146/annurev.arplant.54.031902.135023

  15. Yoshikatsu Sato, Akeo Kadota, Masamitsu Wada Chloroplast movement: Dissection of events downstream of photo- and mechano-perception J Plant Res 116, 1-5 (2003) DOI: 10.1007/s10265-002-0073-3

  16. 佐藤良勝,門田明雄 ヒメツリガネゴケの葉緑体光定位運動 植物の光センシング(監修:和田正三,徳富哲,長谷あきら,長谷部光泰)(2001) 156-160 (ISBN_10: 4-87962-244-3)

Invited Presentation (International meeting)

  1. Yoshikatsu Sato New fluorescent probes for the analysis of plant cell behavior International Webinar "From Cellular Dynamics to Morphology" Dec 7 2021 (Online)

  2. Yoshikatsu Sato New fluorescent dyes for labeling nucleic acid and plant cell wall EMBO Practical Course -Functional Imaging of Plants- (Organizers: Alexis Maizel, Tetsuya Higashiyama, Rüdiger Simon) May 21-30 2019 ITbM Nagoya University (Nagoya)

  3. Yoshikatsu Sato Promoting Chemistry-enabled Bioimaging at Nagoya ITbM Live Imaging Center 1st PSC Advanced Microscopic Imaging Symposium July 31 – August 3, 2018 Shanghai Center for Plant Stress Biology, Chinese Academy of Science (Shanghai)

  4. Yoshikatsu SatoITbM Live Imaging Center as a joint use imaging facility for a beginner to a skilled researcher The 1st ABiS Symposium: Towards the Future of Advanced Bioimaging for Life Sciences Feb 19-20 2017 Okazaki Conference Center (Okazaki)

  5. Yoshikatsu Sato Scrutinizing chemical fluorescent probes in cells at ITbM Live Imaging Center 2016 ITbM-IoC Joint Workshop on Biomolecules and Materials Nov 15-17, 2016 ITbM Nagoya University (Nagoya)

  6. Yoshikatsu Sato Stem cells suppress stem cell formation of the neighboring cells during the reprogramming process in the moss Physcomitrella patens International Symposium on “Nanobiotechnology meets Holonic Communication” Mar 23 2012 Nagoya University (Nagoya)

  7. Yoshikatsu Sato Reprogramming differentiated cells into pluripotent stem cells in the moss NAIST Global COE International Symposium 2010 -Plasticity in Development and Evolution- Nov 11 2010 NAIST (Nara)

 

Invited Presentation (Domestic meeting)

  1. 佐藤良勝 狭小空間内における植物先端成長細胞の伸長制御 日本農芸化学会2022年度京都大会シンポジウム 微小空間制御から見える新たな生命現象と規則 2022年3月16日京都(オンライン)

  2. 佐藤良勝 バイオイメージングにおける蛍光分子の蛍光寿命の利用 第44回日本分子生物学会年会バイオテクノロジーセミナー(共催:ライカマイクロシステムズ(株)) 2021年12月1日(パシフィコ横浜)

  3. 佐藤良勝 異分野技術を駆使して先端成長細胞の周期性を解析する 日本植物学会第85回大会シンポジウム「異分野協調と周期の変調で解き明かす植物の発生メカニズム」2021年9月18日 東京都立大(オンライン)

  4. 佐藤良勝 光源あれこれ 日本植物学会85回大会 関連集会 「植物イメージングに欠かせない知識と技術3」2021年9月18日 東京都立大(オンライン)

  5. 佐藤良勝 有機合成小分子を用いた蛍光寿命顕微鏡による生体試料の観察 第30回日本バイオイメージング学会学術集会シンポジウム「様々な手法で見る生体試料」2021年9月10日(オンライン)

  6. 佐藤良勝 つなぐちから・こえるちからのポジティブフィードバックで得た研究新境地 第8回 名古屋大学 卓越・先端・次世代研究シンポジウム「生命を見る」新たな視点―最先端技術がみせる生命現象と生命現象をとらえる研究者の哲学― 2021年6月23日(オンライン)

  7. 佐藤良勝 “Through the narrow gate” ―狭さをものともしない植物たちー 第62回日本植物生理学会年会シンポジウム「伸ばす・曲げる・太る:メカニクスから読み解く植物の成長戦略」 第62回日本植物生理学会年会 2021年3月16日 松江(オンライン)

  8. 佐藤良勝 コケ植物がからだを張って教えてくれること 新学術「植物の周期と変調」若手の会 2020年10月2日(オンライン)​

  9. 佐藤良勝 「化学者と創る可視化技術」情報分子可視化技術オンラインワークショップ 2020年9月25日(オンライン)

  10. 佐藤良勝 異分野融合を加速させる光技術 GTRオンラインリトリート 2020年9月25日 名古屋大学

  11. 佐藤良勝 蛍光観察ー蛍光分子の光特性を活かす 84回日本植物学会 関連集会 「植物イメージングに欠かせない知識と技術2」2020年9月19日 名古屋オンライン大会

  12. 佐藤良勝 化学者と創る可視化技術 情報分子可視化技術オンラインワークショップ 2020年9月25日

  13. 佐藤良勝 近赤外チャンネルを使ってみませんか 83回日本植物学会 関連集会 「植物イメージングに欠かせない知識と技術」2019年9月15日 東北大学川内北キャンパス(仙台)

  14. 佐藤良勝 植物先端成長細胞の力学的可塑性について 日本メカノバイオロジー研究会 2019年9月3-4日 ベネッセアートサイト直島(香川)

  15. 佐藤良勝,多喜正泰 植物イメージングにおける超耐光性近赤外蛍光色素の利用 Application of super-photostable near Infrared dye for plant imaging 第27回日本バイオイメージング学会シンポジウム2「プローブと個体のイメージング」2018年9月3-4日 産業技術総合研究所つくばセンター共用講堂(筑波)

  16. 多喜正泰, 佐藤良勝 超耐光性蛍光色素が可能にする先端バイオイメージング 生命科学連携推進協議会 成果シンポジウム 2018年6月5日 一橋講堂(東京)

  17. 佐藤良勝 名古屋大学ライブイメージングセンター 東山新学術 第一回異分野融合ミーティング 2017年8月22日 名古屋大学(名古屋)

  18. 佐藤良勝 化学者と創るトランスフォーマティブティブ蛍光分子​ 第7回生命科学阿波おどりシンポジウム 2017年8月15-17日​ 徳島大学藤井節郎記念医科学センター(徳島)

  19. 佐藤良勝 化学者とともに拓く名大ITbMライブイメージングセンター 第6回蛍光イメージングミニシンポジウム 2017年7月27日 北海道大学電子科学研究所(札幌)

  20. 佐藤良勝 ITbM Live Imaging Center as a site for proof of concept in chemistry enabled bioimaging /バイオイメージング展開を見据えた有機小分子の概念実証の場として機能するITbMライブイメージングセンター 第69回日本細胞生物学会大会シンポジウム 化合物を用いたイメージングの新展開 −ライブセルによる分子・細胞実態の解明に向けて− 2017年6月14日 仙台国際センター(仙台)

  21. 佐藤良勝 コケ植物ヒメツリガネゴケのリプログラミング過程において幹細胞化能を獲得した細胞は隣接細胞の幹細胞化を抑制する 第68回日本細胞生物学会大会シンポジウム 植物システムを支える運命の分岐点 2016年6月15日 京都テルサ(京都)

  22. 佐藤良勝,杉本渚 超解像顕微鏡をもちいたタイムゲートイメージング 形態学と生理学の融合に向けてー植物の「形」と「現象」の狭間を埋める研究の最前線 日本植物学会第79回大会シンポジウム 2015年9月6日 朱鷺メッセ:新潟コンベンションセンター(新潟)

  23. 佐藤良勝 高感度検出器を用いた植物細胞骨格のライブイメージング 日本顕微鏡学会平成25年度関西支部特別講演会 2013年9月7日 兵庫県立大学 姫路工学キャンパス 書写記念館 記念ホール(兵庫)

  24. 佐藤良勝 多検体蛍光タイムラプスイメージングの実際 日本植物学会第75回大会ーイメージングおよびその関連技術と植物学ー 2011年9月18日 東京大学駒場キャンパスI(東京)

  25. 佐藤良勝 ヒメツリガネゴケ幹細胞形成過程の多点タイムラプスイメージング解析 文部科学省科学研究費補助金学術創成研究主催シンポジウム 植物の成長・分化を制御する生理活性ペプチドとmicroRNA ー新規分子群と新技術ー2007年11月1日 岡崎コンファレンスセンター(岡崎)

  26. 佐藤良勝 長時間多点タイムラプスイメーニングによるヒメツリガネゴケ幹細胞化過程の解析 視る生物学2ーイメージングの現在と未来ー 2007年11月21日 奈良先端科学技術大学院大学(奈良)

  27. 植物細胞の長時間多点タイムラプスイメージング 日本顕微鏡学会第63回学術講演会-植物の中を覗く:ライブイメージングから電顕トモグラフィーまで  2007年5月22日 朱鷺メッセ:新潟コンベンションセンター(新潟)

  28. ​佐藤良勝 ヒメツリガネゴケ頂端細胞の細胞骨 ー植物細胞における細胞骨格機能発現:滑り説から50年ー 2006年12月25-27日 岡崎コンファレンスセンター(岡崎)

  29. 佐藤良勝 接触刺激による葉緑体運動と細胞外カルシウムイオン 第8回植物生体膜シンポジウムストレス下における膜機能の発現ー 2005年9月23日 富山大学(富山)

  30. 佐藤良勝 ヒメツリガネゴケにおける微小管構築 日本植物学会第69回大会ー植物微小管構築の分子機構解明への新展開ー2005年9月22日 富山大学(富山)

  31. 佐藤良勝,和田正三,長谷部光泰,門田明雄光刺激,接触刺激により誘導される葉緑体の運動反応と細胞骨格 21世紀COE生命科学若手ワークショップ-植物におけるアクチン系タンパク質の機能発現 2004年1月24日 兵庫県立大学(兵庫)

  32. 佐藤良勝 植物オルガネラ運動研究のモデルとしてのヒメツリガネゴケ 基生研研究会ー新しいモデル生物が拓く生物科学フロンティアー 2004年3月1日 岡崎コンファレンスセンター(岡崎)

  33. 佐藤良勝 ヒメツリガネゴケ微小管のダイナミクス 基生研研究会植物の微小管構築機構の新展開ー 2003年10月18日 岡崎コンファレンスセンター(岡崎)

 

 
 
 

2021-2030